cpe外泌体的提取技术采用了无血清培养基技术,这一技术能够排除血清中本身存在的外泌体,因为cpe外泌体是从动物脐带精华中提取出来的,而血清中的外泌体完全无动物源性,所以能够保证提取出来的成分纯净度,另外不仅能提高细胞释放外泌体的数量,还可以保证外泌体中营养因子的huo性哦。
保持时间更久,没有恢复期,无创无痛,做完就有效果,无排异和身体同源等。
外泌体是指包含了复杂 RNA 和蛋白质的小膜泡 (30-150nm),现今,其特指直径在40-100nm的盘状囊泡。1983年,外泌体首次于绵羊网织红细胞中被发现, 1987年Johnstone将其命名为“exosome”。多种细胞在正常及病理状态下均可分泌外泌体。其主要来源于细胞内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体,经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中 。
所有培养的细胞类型均可分泌外泌体,且外泌体天然存在于体液中,包括血液、唾液、尿液、脑脊液和乳汁中。 有关他们分泌和摄取及其组成、“运载物”和相应功能的精确分子机制刚刚开始研究。 外泌体目前被视为特异性分泌的膜泡,参与细胞间通讯,对外泌体的研究兴趣日益增长,无论是研究其功能还是了解如何将其用于微创诊断的开发。
效果挺好的。
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岁月从来都不会善待懒惰的女人,ANGI蓝宝石眼周外泌体,告别眼皮开刀,刺激胶原生长填补泪沟和眼窝凹陷。
岸缇蓝宝石眼周外泌体操作方法:皮肤松弛部位,皮下浅层,每点0.1毫升,间距3至5mm一个点位。下眼皮肤操作量为:一边0.5至0.8ml;上眼皮肤操作量:一边0.3ml;如上眼皮是属于肿泡眼,可不操作上眼皮。
BIOG产品特点
◎操作简便快速,可在半小时内获得理想的RNA;
◎提取RNA纯度高,无抑制剂,A260/A280为1.8-2.0;
◎产量更高,较国内同类产品高出20%;
◎可用于小量(200μL)血清、血浆、胸腹水、脑脊液、滑膜液、水样等液体样本中游离样本中RNA的提取;
◎不含苯酚和氯仿等有毒溶剂,安全无毒。
BIOG操作步骤
1. 请自行准备:无水乙醇、无RNA酶1.5mL离心管。
2. 取出洗涤液,按以下操作:
a)洗涤液A:21mL加入9mL无水乙醇,混匀;42mL加入18mL无水乙醇,混匀。
b) 洗涤液B:9mL加入21mL无水乙醇,混匀;18mL加入42mL无水乙醇,混匀。
c) 配制好的洗涤液如出现沉淀,可在37℃溶解,摇匀后使用。
[if !supportLists]3. [endif]取无RNA酶的1.5mL离心管,加入200μL样本,4μLRNA Carrier混合均匀,再加入300μL裂解液及20μL消化液,漩涡震荡10秒,充分混匀,56℃水浴10分钟至完全裂解。
4. [endif]加入1mL无水乙醇,轻轻颠倒混匀,如有半透明悬浮物,不影响RNA的提取与后续实验。
5. [endif]将吸附柱放入收集管内,将760μL上述溶液转入吸附柱内,静置2 分钟,12,000 rpm 4℃离心1 分钟,弃收集管内废液。
6. [endif]将吸附柱放回收集管内,将剩余760μL溶液转移至吸附柱内,重复步骤5。
7. [endif]将吸附柱放回收集管内,加500μL 洗涤液A至吸附柱内,12,000 rpm 4℃离心1 分钟,弃收集管内废液。
8. [endif]将吸附柱放回收集管内,加500μL 洗涤液B至吸附柱内,静置2分钟,12,000 rpm 4℃离心1 分钟,弃收集管内废液。
9. [endif]将吸附柱放回收集管内,12,000 rpm 4℃离心2 分钟,离去残留的洗涤液。
10. [endif]取出吸附柱,放入新的无RNA酶的1.5 mL离心管内,加入30-50μL洗脱液,静置3 分钟,12,000 rpm 4℃离心2 分钟,收集RNA溶液。
11. [endif]-70℃保存,或直接用于下一步实验。
注意事项
1. 为防RNA酶污染,实验过程中最好戴一次性干净手套、口罩,使用处理过的无RNA酶的容器和无RNA酶的超纯水 。
2. 裂解液、洗涤液含有刺激性化学物质,请做好防护措施,避免直接接触皮肤,防止吸入口鼻。如不慎沾染皮肤或眼睛,请立即用清水或生理盐水冲洗,必要时请就医。
3. 裂解液如有白色絮状物析出属正常现象,置于37℃水浴中溶解即可。
近些年来,关于外泌体的研究如火如荼。外泌体在免疫中抗原呈递、肿瘤的生长与迁移、组织损伤的修复等生理病理上起着重要的作用。同时,不同细胞分泌的外泌体具有不用的组成成分和功能,可作为疾病诊断的生物标志物。 来自华中科技大学同济医学院附属协和医院的崔老师,对外泌体提取积累了自己的心得,并将自己的研究成果发表在 Bioactive Materials 上。 下文是崔老师的分享。
要进行关于外泌体的研究,提取纯化外泌体一直是大家非常关注的问题。 能否获得较高纯度的足量外泌体,直接关系着后续研究能否开展 。虽然目前仍然没有能同时保证外泌体的含量、纯度和生物活性的提取方法,但是我们可以结合当前的实际情况,对外泌体提取做一些探讨和经验总结。
超速离心(差速离心)法是目前最常用的外泌体提取方法 ,即采用低速离心、高速离心交替进行,可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单,获得的囊泡数量较多而广受欢迎。本人近期发表的论文中最后也是采用了这种方法。
具体的步骤大家都比较熟悉,无论是提取血清来源的外泌体,还是细胞条件培养基来源的外泌体 ,大家都习惯于先将血清或者条件培养基收集后保存于-80℃的温度下,等达到一定量后,再批量进行超速离心。
这样的话, 大家会发现一个非常严重的问题,尤其是在拍摄电镜的时候——背景杂质很多,并且很多囊泡的形态不够典型,不是文献中描述的那种典型的双凹圆盘状或者茶托状。
通过几次实验的对比,我大概发现了原因, 主要是由于在冻存收集到培养基的时候,没有进行低速离心和普通高速离心。
低速离心可以去除培养基中的未贴壁细胞、死细胞以及大的细胞残骸,而普通高速离心可以去除其中的大型细胞外囊泡。无论是未贴壁细胞、死细胞、大的细胞残骸,还是大型细胞外囊泡,在-80℃冻存及复温的过程中,都会发生破裂,产生小型的细胞膜碎片结构。
这样的话,就导致了电镜背景很杂乱,难以达到高水平论文杂志期刊的要求。另外,还会导致这样一个矛盾现象,即蛋白定量中计算的外泌体产量虚高,而蛋白免疫印迹中外泌体标记物蛋白的含量却不高。
因此,在这里推荐给大家一个小贴士
就是在收集准备提取外泌体的条件培养基或者血清时,一定要提前做到低速离心和普通高速离心这一步,尤其是为了做透射电镜或者蛋白免疫印迹实验而提取的外泌体 ,一定要注意这一点。尽管过程比较费时,但是能生产出有用的结果才是更重要的。
至于其他的外泌体提取方法,如密度梯度离心、色谱柱、超滤离心法、微流控芯片法、磁珠免疫法、多聚物沉淀法,我看到学校里面鲜少有人去尝试,毕竟更麻烦。但不同的方法各有优劣,大家可根据自己的实验,谨慎选用。
关键词:外泌体操作对比照