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lonza电转外泌体(lonza电转液)

2023-01-12 03:57:03 作者:max
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在边长为a的正方形平面的中垂线上,距中心O点a/2处,有一电荷为q的正点电荷,则通过该平面的电场强度通量?

q/6ε0。

因为是正方形平面,你可以发现,O点正好位于一个边长为a的正方体的体心,因为是对称的,所以每个侧面的电通量都相等,这个正方体6个面包围点电荷q,6个面的总通量是 q/ε0,每个面就是六分之一了。

为了计算方便并且不致引起混乱,我们还规定曲面上各个面元的法线方向都必须在曲面的同一侧。面元的法线方向究竟取在曲面哪一侧在具体问题中有具体的约定,例如对于闭合曲面,面元的法线方向只能取为向外,即取作外法向。

扩展资料:

注意事项:

合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率,也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的最佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的最佳电场强度。

质粒的质量:应选择纯度高的质粒,首先DNA/RNA应该超纯(A260/A2801.8),其次应不含内毒 素,同时质粒应溶于双蒸水而不是TE缓冲溶液。另外DNA浓度不宜过高。

电击会对细胞造成一定程度的伤害,在转染试剂的选择上要注意,应选择具有细胞膜修复成分的电转染试剂,如Entranster-E,可将电击对细胞的损伤降到最低。并且Entranster-E可适用于lonza、Bio-rad、BTX等多种电转仪。

参考资料来源:百度百科-电通量

参考资料来源:百度百科-电场强度

参考资料来源:百度百科-点电荷

电转染实验常见问题解答(下)

以Entranster-E 电转染试剂为例

八、电转染实验,如何设置正确的siRNA实验对照组?

1.设置空白对照组,检验细胞生长状态。

2.设置阴性对照组,无血清培养基 + Entranster-E 电转染试剂 + 阴性siRNA。

3.设置阳性对照组,无血清培养基 + Entranster-E 电转染试剂+ 靶向siRNA 转染管家基因,比如GAPDH 或者 Lamin A/C,之后通过western blotting 或者 mRNA quantification检测基因的表达。

九、电转染实验时,DNA有什么要求?

使用高纯度、无菌和无污染的DNA进行电穿孔实验。质粒DNA要求无内毒素,OD值为1.8-2.0。不建议使用微型核酸制备试剂盒准备DNA,因为它可能含有高水平的内毒素。

不要使用仅用乙醇沉淀法纯化的DNA。乙醇沉淀法中残留的盐会引起电流改变并对电穿孔产生负面影响。 建议DNA的浓度范围为1-5

mg/ml。使用浓度较高的DNA可能会导致与细胞不均匀混合。而核酸浓度较低则可能稀释电穿孔混合物。

十、电转染实验时,siRNA有什么要求?

使用高纯度、无菌的siRNA。确定电转染的最佳siRNA浓度。建议在250-750nM最终浓度范围内的进行siRNA不同浓度的梯度实验。建议设置一个非靶向或无意义的siRNA对照序列,以验证实验siRNA的特异性。同时也验证,针对单个基因用多个siRNA序列实验产生的表型是否是由于脱靶效应所致。

十一、如何提高电转染效率

1.  选择合适的电场强度

合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的最佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的最佳电场强度。

2.  选择合适的细胞

用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞(15代以内,传代后2d)。因为处于对数生长期的细胞分裂旺盛,表面结构致密比稳定期的细胞差,电转后,细胞膜的恢复能力强,而且处于有丝分裂期的细胞更容易接受外源DNA.

3.  质粒质量要好

应选择纯度高的质粒,首先DNA/RNA应该超纯(A260/A2801.8),其次应不含内毒 素,同时质粒应溶于双蒸水而不是TE缓冲溶液。另外,DNA浓度不宜过高。

4.  选择合适的电转染试剂

电击会对细胞造成一定程度的伤害,在转染试剂的选择上要注意,应选择具有细胞膜修复成分的电转染试剂,如Entranster-E,可将电击对细胞的损伤降到最低。并且,Entranster-E可适用于lonza、Bio-rad、BTX等多种电转仪

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