间充质干细胞上清（间充质干细胞最新）

本文还提供了解决这些间充质干细胞上清问题的实用技术背景。

大鼠骨髓间充质干细胞的分离及培养

骨髓间充质干细胞(Bone Mesenchymal Stem Cells, BMSCs)是骨髓内除造血干细胞之外的另一类非常 重要的成体间充质干细胞，是骨髓造血微环境的重要组成部分，具有支持和调控造血的作用，能被诱导分化为成骨细胞、软骨细胞、心肌细胞等多种细胞类型。

大鼠骨髓间充质干细胞的分离及培养技术

  一、实验前准备 

实验开始前，将眼科剪刀、眼科镊子、培养皿，15ml 离心管、移液管、移液枪、枪头等放入无菌超净工作台，以紫外线照射 30min。

1. 选取 SPF 级，体重 100~150g 左右的SD 大鼠，断颈处死。将大鼠置于体积分数为 75%的乙醇中浸泡 5 min。

2. 工作台紫外消毒后，采用通风机通风 3min。以 75%酒精擦拭操作台和双手。

3. 无菌条件下，准备好大剪刀、止血钳、眼科剪刀、眼科镊子、干净培养皿。将大鼠仰卧在超净台内的干净培养皿上。

 二、全骨髓提取  

1. 眼科镊沿腹股沟处提拉大鼠皮肤，眼科剪刀剪开腹股沟皮肤，暴露腿部肌肉，从关节处将大鼠大腿剪下。除去骨表面附着的软组织，置于另一无菌培养皿中。

2. 假如在平时操作中，剪刀不易将骨表面肌肉组织剔除干净，可采用无菌纱布擦拭，可方便的将肌肉组织剔除干净，提高所分离细胞的纯度。

3. 用无菌PBS 浸泡清洗。眼科剪剪断两端骨骺，显露骨髓腔，放置于 10ml 含体积分数为10%胎牛血清的新鲜DMEM 完全培养液的无菌培养皿中，取出 1mL 注射器，用镊子钳起骨头的一端，并用注射器吸取完全培养液冲洗骨髓腔至另一培养皿中，由一段骨髓腔冲出骨髓， 重复 3 次，再反方向冲出骨髓，重复 3 次。直至骨髓腔冲洗液变清亮后停止。

  三、细胞制备

吹打细胞悬液，以便分散细胞，收集骨髓悬液于 15 mL 离心管中，1000 r/min 室温离心5 min。

 四、接种培养  

1. 离心后去上清，用 6mL 完全培养液重悬，轻轻吹打，制成单细胞悬液，转移至 25 cm

2. 培养瓶中，轻轻摇匀;置于 37 ℃、体积分数为 5%的 CO2饱和湿度培养箱中培养。

3. 24 小时后，镜下观察，可见细胞浓度极大，全为球形的大鼠骨髓中的血红细胞，如堆积的沙粒状，悬浮于培养液中并有少量血红细胞相互聚集发生。换液，去除漂浮的血细胞， 以后每两三天换液 1 次，直到增殖达到融合。4. 约 7 天后，倒置显微镜下观察细胞形态与生长情况，可见贴壁细胞数量明显增加，融合达 80%~90%，可进行细胞传代。

  五、细胞传代

待细胞融合至 80%~90%开始传代，吸去培养液，以预热的 PBS 轻轻冲洗后，吸去 PBS。采用消化液消化 1-2 分钟，骨髓干细胞贴壁特性强，比较难于消化，消化液可采用提高EDTA 浓度的方法，镜下可见细胞皱缩变圆，终止消化。本实验的消化液配方可以很好地消化，并不会损伤细胞。除消化液特殊外，其他方法同本光盘内的细胞传代方法。

本实验以 1：2 进行传代。

  六、细胞观察 　

细胞传代到第 3 代时，生长融合后，细胞形态均一，呈长梭形集落样分布，并可重叠生长，细胞纯度可达 95%以上。此时细胞可用于后续实验，或采用表表面标志物进一步验证其纯度：验证标准为CD34 阴性，CD44 阳性。

从本实验结果中可见：全骨髓培养法可分离培养出纯度高、活力旺盛的骨髓间充质干细胞。

  七、注意事项   

1. 缓慢冲洗骨髓腔：

冲洗骨髓腔时为了避免冲起许多气泡损伤细胞，应缓慢冲洗。

2. 严格无菌：

取骨髓间充质干细胞的整个过程都需要谨慎，保证无菌操作

3. 培养基中血清浓度：

过多的血清中细胞因子可以促进细胞增殖，但细胞老化也快。而且一般来说，选择质量好 10%的胎牛血清有利于 MSCs 的培养

4. 原代细胞静置培养：

原代细胞置于培养箱 24～48h 内，应处于静置状态，不宜取出培养瓶观察生长状况，这将使原代分离细胞难以贴壁。

干细胞上清液抗衰老安全吗？

干细胞上清液是什么？

l 人体内为了替换因受伤或疾病而受损的细胞或老化细胞，被称为干细胞的母细胞会产生新的细胞来补充。干细胞具有分化成各种细胞的能力，例如骨骼，皮肤，血液，神经和心肌等。

l 细胞因子治疗，是透过注射干细胞所分泌的各种生长因子等的细胞因子来引发自我修复能力，让老化或受损组织再生的新治疗方法。这治疗方法因不是直接使用干细胞，而是使用含有干细胞成分的培养液（上清液），也被称为非细胞再生医疗。

培养干细胞时，干细胞会分泌500种以上的蛋白质的成分，这种分泌液就是干细胞上清液，其成分中含有丰富信息传递物质的成长因子，是激活细胞的关键，并在体内损伤的组织和细胞机能的恢复中扮演着重要的角色，特别针对延缓细胞衰老，修复受损细胞，提升身体机能很有效果。

这是把含有皮肤再生所需的生理活性物质“脂肪由来干细胞上清液”直接导入到肌肤和体内的治疗。因为从内外导入安全而高效的生理活性物质，效果值得期待。而且是在内部生成胶原蛋白、玻尿酸等，修复受损细胞，可以看到老化的皮肤和身体机能的恢复。

干细胞上清液的安全性

l “脂肪由来干细胞上清液”是在培养人体脂肪由来干细胞时得到的“上清部分”。在不包含遗传因子的安全的“培养上清液”中，包含了在培养时被释放出的数百种生理活性物质。

l “脂肪由来干细胞上清液”是在日本国内细胞加工机构的严格的质量管理下做成的，可确认其高度的安全性。

干细胞上清液是什么？

人体干细胞培养上清液是指对人体由来间叶干细胞培养过程中产生的上清液进行过滤而取出干细胞后的液体。也就是从干细胞培养液中去除干细胞以及其他所有细胞成分，余留的液体。余留的液体由培养基、生长因子以及外泌体三部分组成。这部分液体里里富含多种营养物质，对干细胞有滋养作用，它可以让干细胞健康的活着和增殖。

有的人经常熬夜喝酒工作压力大什么的，年纪轻轻的还不如老人活得健康呢，干细胞在营养液中分泌自己需要成长的细胞因子来让自己更加的活跃。希望我的回答对你有帮助！

最近听说一种抗衰老黑科技产品：干细胞上清液。有集美了解过吗？求科普

干细胞上清液是从脐带组织提取干细胞，干细胞旁分泌多种蛋白质核酸等细胞因子和外沁体成份，像奥本源的无细胞驻颜利用了这项技术，实现延缓衰老。

干细胞诱导-迪医明生物

间充质干细胞属于成体干细胞，在体外不同条件下诱导分化为骨、软骨及其他结缔组织，因其来源广泛，分离无创伤，较低的免疫原性、生长周期短等特点，是组织工程种子细胞的重要来源。干细胞的诱导分化一方面是干细胞鉴定的主要方法，另一方面也是干细胞功能学研究的主要途径。采用体外条件培养基诱导培养下，人间充质干细胞应能够分化为成脂肪、骨、软骨细胞。成脂分化经油红O染色法鉴定，成骨分化经茜素红染色法鉴定，成软骨分化经阿尔辛蓝染色法鉴定。

迪医明生物不仅可以提供不同来源间充质干细胞、iPS细胞，配套培养含血清和无血清培养体系以及诱导成脂、成骨、成软骨完全培养基、三系分化染色鉴定试剂盒，特别推荐您选择间充质干细胞技术服务项目——成脂、成骨、成软骨诱导技术指导和诱导实验外包服务。

迪医明生物干细胞系列产品检测结果表明，细胞无细菌、真菌、霉菌、支原体和病毒污染，表达多种间充质干细胞特异性标记，具有良好的增殖和分化潜能，可分化为成骨细胞、脂肪细胞、软骨细胞等。

产品性能

1.细胞形态

2. 细胞表型

间充质干细胞P20代细胞表型

流式细胞仪鉴定细胞表型

3.细胞诱导分化

3.1 成脂、成骨、成软骨诱导分化操作步骤

所需材料

0.05%Trypsin-0.02%EDTA（货号：CD05-001C）

Phosphate-BufferedSaline (1×PBS) （货号：BS01-001C）

间充质干细胞完全培养基（货号：CM01-001A）

间充质干细胞成脂诱导分化完全培养基（货号：DM01-001B）

间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基（货号：DM02-001B）

间充质干细胞成软骨诱导分化完全培养基（货号：DM03-001B）

成脂诱导分化步骤

注意：本操作规程以六孔板为例

1. 将间充质干细胞置于37℃，5% CO2的培养箱中培养。

2. 当细胞生长到达对数期时，用0.05%Trypsin-0.02%EDTA进行消化。

3. 将消化下来的间质干细胞按照2×104 cells/cm2的细胞密度接种在六孔板中，每孔加入2 mL完全培养基。

4. 将细胞置于37℃，5% CO2的培养箱中进行培养。

5. 每隔三天换液，直到细胞融合度达到100%或者过融合。

6. 小心地将间质干细胞完全培养基吸走，向六孔板中加入2 mL间充质干细胞成脂诱导分化培养基 A 液。

7. 诱导3天后，吸走六孔板中的A液，加入2 mL间充质干细胞成脂诱导分化培养基B液。

8. 24h后，吸走B液，换回A液进行诱导。

9. A液和B液交替作用3-5次后（12-20天），继续用 B 液维持培养4-7天直到脂滴变得足够大、圆。B 液维持培养期间，每隔2-3天需要换用新鲜的B液。

成脂（油红O染色） 成骨（茜素红染色）

成骨诱导分化步骤

注意：本操作规程以六孔板为例

1. 将间充质干细胞置于37℃，5% CO2的培养箱中培养。

2. 当细胞融合度达到80-90%时，用0.05%Trypsin进行消化。

3. 将消化下来的间充质干细胞按照2×104 cells/cm2 的细胞密度接种在事先包被0.1%明胶的六孔板中，每孔加入2 mL完全培养基。。

4. 将细胞置于37℃，5% CO2的培养箱中进行培养。

5. 当细胞融合度达到60%-70%时，小心的将孔内完全培养基吸走，向六孔板中加入2 mL间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基。

6. 每隔3天换用新鲜的间充质干细胞成骨诱导分化完全培养基（使用前需预热至37℃）

7. 诱导2-4周后，视细胞的形态变化及生长情况，用茜素红进行染色。

注意：为防止成骨细胞脱落，建议成骨过程中出现大量钙结节之后，换液形式变为每两天一次半量换液。

成软骨诱导分化步骤

1. 进行成软骨诱导实验之前，需要对常规消化后的细胞进行计数。

2. 将3-4×105个细胞转移到15 mL离心管中，250 g离心4 min。

3. 吸去上清，加入0.5 mL预混液，重悬上一步离心所得沉淀，以清洗间充质干细胞，室温下150 g离心5 min。

4. 重复步骤3，再次清洗细胞。

5. 将上一步所得沉淀用0.5 mL间充质干细胞成软骨诱导完全培养基重悬。

6. 室温下150 g离心5 min。

7. 拧松 离心管盖以便于气体交换，将其放置于37℃，5% CO2的培养箱中培养。

注意：

① 此步骤不要吸掉上清和重悬细胞。

② 24 小时之内不要摇动离心管。

8. 当细胞团出现聚拢现象时（一般为24 h或48 h后，实际视细胞生长情况而定）轻弹离心管底部使软骨球脱离管底悬浮在液体中。

9. 自接种开始计算，每隔2-3 d 给细胞换用新鲜的成软骨诱导完全培养基，每管约0.5 mL成软骨诱导分化完全培养基。

注意：小心操作，不要吸出软骨球。

10.换液之后，轻弹离心管底部使软骨球脱离管底悬浮在液体中。稍加拧松离心管盖放入37℃，5% CO2的培养箱中继续诱导培养。

11.一般持续诱导21-28天后，可对软骨球进行福尔马林固定和石蜡包埋切片，最后进行阿利辛蓝染色。

成软骨（阿利新蓝染色）

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