动物胚胎干细胞的处理（动物胚胎干细胞具有全能性吗）

本文的目的是加深你对动物胚胎干细胞的处理和动物胚胎干细胞具有全能性吗的认识，以便了解它们之间的关系。

动物胚胎干细胞的应用

l 生产克隆动物

1.1 利用ES细胞生产克隆动物的优势 近年来的研究表明。动物早期胚胎细胞、动物胚胎内细胞团细胞，动物ES细胞和动物原始生殖细胞均具有全能性和多能性。动物早期胚胎细胞数最少，在体外培养易分化。动物原始生殖细胞具有和ES细胞相似的特性，在体外诱导分化可形成多种组织，但PGCs细胞数量有限，限制了其应用。动物ES细胞具有全能性和多能性，并可以在体外增殖、冷冻，因而是克隆动物的理想材料。

1.2 利用ES细胞生产克隆动物的意义

1.2.1 大幅度提高良种家畜的繁殖效率:ES细胞与胚胎嵌合和ES细胞核移植技术可使一头良种家畜在短期内生产较多的具有遗传同质型的动物。这不但可以充分发挥良种动物的生产潜力，而且可以加速动物良种化进程。

1.2.2 抢救濒危动物，保存稀有动物遗传资源:利用ES细胞克隆动物技术，一方面在短期内可以繁殖大量的濒危动物，迅速扩大濒危动物的群体数最;另一方面可以用冷冻的全能性细胞作供体进行细胞核移植克隆稀有动物。

1.2.3 创造新物种:用异种动物细胞核移植和异种动物胚胎嵌合的方法可获得具有新性状的克隆动物或异种动物的嵌合体，这样有可能克服种间繁殖障碍，创造出新物种，获得用传统交配方法无法获得的新性状。

1.2.4 为实验生物学提供新材料:利用细胞核移植技术可以同时克隆遗传基础完全相同的生物个体。这些生物个体可用于遗传参数的估测，饲料营养价值的评定以及环境与动物关系的研究等领域。

2 生产转基因动物

2.1 生产转基因动物的程序和方法 利用ES细胞生产转基因动物的方法有：

(1)胚胎嵌合法:将一定数量的转基因ES细胞注射入囊胚或将转基因ES细胞和裸胚共同培养，生产转基因嵌合胚，将转基因嵌合胚移植给同期发情的受体母畜，使其妊娠，生产携有外源基因的嵌合体动物；

(2)细胞核移植法:以转基因ES细胞作供体进行细胞核移植，生产转基因胚胎，将转基因胚胎移植给受体母畜，生产转基因动物。

2.2 生产转基因动物的意义 与传统育种方法相比较，用ES细胞生产转基因动物的优势是：

(1)打破了物种的界限，突破了亲缘关系的限制，加快了动物群体遗传变异程度。

(2)可以进行定向变异和育种。利用同源重组技术对ES细胞进行遗传操作，通过细胞核移植生产遗传修饰性动物。有可能创造新的物种；

(3)利用ES细胞技术，可在细胞水平对胚胎进行早期选择。这样可以提高选择的准确性，缩短育种时间。

利用阴细胞生产转基因动物，具有重要的作用，表现在：

2.2.1 促进动物生长，提高畜产品产量:目前，已将大鼠、牛、绵羊及人的GH基因先后导人小鼠基因组，得到的转基因小鼠在快速生长期(5～11周龄)生长速度为对照组的4倍。转bGH基因猪的研究结果表明，转基因猪日增重增加，饲料转化率大幅度提高。

2.2.2 生产药用蛋白:可以从转基因动物血浆和乳汁中获取外派药用蛋白质。从转基因动物血浆中提取重组蛋自质的优点是可以反复采血而不需要杀死动物，缺点是采血量受到限制和一些具有生物活性的重组蛋白质分泌进血浆对动物健康有一定的影响。动物乳腺摄取、合成、分泌蛋白质的能力很强，并且能对重组蛋白质进行加工(包括β-羟基化，糖基化，γ-羟基化等)，同时能将重组蛋白质折叠成有功能的构象。因此，转基因动物乳腺成为公认的生产重组蛋白质的理想器官。

2.2.3 动物抗病育种:通过克隆特定病毒基因组中的某些编码片段，对其进行一定修饰后转人家畜基因组，如果转基因在宿主基因组中能够表达，那么畜禽对该病毒的感染应具有一定的抵抗能力。Yamashita等将克隆的小鼠Mx基因有意义链和反意义链插入禽反转录病毒载体中，并以之转染鸡胚胎成纤维细胞(CEF)。结果表明，插入有意义链反转录病毒载体转染的(CEF)对人流感病毒、禽流感病毒的感染具有抵抗作用。

3 生产用于人类器官移植的动物器官

3.1 使人类ES细胞与猪等动物的胚胎嵌合，通过人、猪嵌合体动物为人类提供可移植器官。这样，可以克服异种动物器官移植所出现的免疫排斥反应。

3.2 定向诱导人类ES细胞分化，形成供移植的人体器。利用体细胞核移植技术在体外生产人的克隆胚胎，当克隆胚胎发育至袋胚时，分离并体外培养人胚胎ICM，获取ES细胞。然后在体外定向诱导分化ES细胞，生产包括人肌肉、神经和造血细胞的细胞组织[5]。已有在体外定问分化诱导ES细胞产生造血细胞，神经细胞和心肌组织并将其移植给成年小鼠的报道。体外受精胚胎及体细胞核移植胚胎为人类ES细胞的分离与克隆提供了实验材料。从原始生殖细胞克隆人类ES细胞的成功为利用该项技术生产人体器宵开辟了新途径。Pittenger等已从人间充质细胞分离人的多能性细胞。这些都推动了以人类ES细胞为材料生产人体器官研究的进展。

3.3 将人的基因导入猪等动物ES细胞，生产禽人基因猪.利用转基因猪为人类提供器官移植的材料。

4 研究真核细胞基因表达与调控一种方法是将外派基因导人ES细胞，研究基因在细胞分化和胚胎发育中的作用。另一种方法是利用基因定位整合技术使ES细胞特定位点的基因突变，缺失或失去功能，研究缺乏特定基因的生物细胞分化及胚胎发育状况，从而确定特定基因在生物发育过程中的作用，具体表现在：

4.1 利用转基因技术研究动物内分泌功能的关系例如，利用基因定位技术破坏胚细胞相关基因，可以制备甲状腺、肾上腺、卵巢、胰腺功能紊乱的小鼠模型，来研究高血压和繁殖功能与下丘脑一垂体分泌激素调节的关系。携带有metallothionein启动子和人或大鼠生长激素基因的小鼠，由于人或大鼠生长激素基因的过度表达，使该小鼠比正常小鼠大得多。

4.2 利用基因定位技术可以研究肿瘤的形成过程转基因小鼠可用于研究肿瘤的形成过程。近交小鼠肿瘤发生过程的特异性表明，肿瘤的发生具有遗传性。转基因小鼠肿瘤的形成，为进一步了解从细胞增生到肿瘤形成的过程提供了材料。

4.3 利用基因定位技术研究激素与控制生物发育基因的关系 利用细胞遗传操作技术增加或删去控制发育的有关基因，制备基因缺失型或基因定型小鼠，观测这种小鼠的表现以及对有关激素作用的反应。ES细胞遗传操作技术为从细胞到个体水平系统研究激素和基因对动物生长发育的调控机制提供了工具。

4.4 寻找与生长发育有关的基因 诱捕载体(Entrapment)与ES细胞相结合形成的一种新技术，可以识别在动物发育过程中表达的任何基因及其活动。例如，已知在生物发育过程中具有重要作用的某种蛋白质的结构，利用RT-PCR技术可以合成其相应的cDNA，通过分子杂交技术就可确定该基因在染色体中的位置。利用ES细胞遗传操作技术，可以有目的的探索同源异型盒家族基因的时空表达格局及其与细胞分化和胚胎发育的关系。

5 建立人类遗传病研究的动物模型 Piedrahita等以PJPB和PNMC109为载体(含有抗新霉素G418基因和aPLOE基因序列)，利用间源重组技术定位操作ES细胞的阿卟脂蛋白(apolipoprotein)E基因，制备aPloE基因缺失型ES细胞，将这种ES细胞导入囊胚腔，形成了嵌合胚胎。雌雄突变小鼠交配，生产了携带有ApLoE基因突变的小鼠[13]。这种APDE基因突变性小鼠为科学家研究阿卟脂蛋白缺乏症及其临床治疗方法提供了动物模型。

6 研究ES细胞在胚胎发育过程中的功能Hirofumi等将β-半乳糖苷酶基因导入ES细胞，将转染β-gal基因的ES细胞与早期胚胎嵌合，通过检测β-gal基因的表达来研究ES细胞在细胞分化、胚胎发育及参与各种组织形成过程中的作用。

7 研究基因表达及其产物的生理作用 ES细胞遗传操作技术也可用来研究蛋白质或酶的生理功能。Cozzi等用同源重组技术破坏ES细胞编码金属蛋白酶组织抑制因子(TIMP)的基因，产生金属蛋白酶基因缺失型ES细胞。其特性与同质细胞相似，比普通ES细胞更具有侵袭力。

8 研究同源重组序列长度与外源基因整台效率的关系 Heinte等将Rb基因片段与neo,hyg和HPRT标记基因相连接插入载体的BglⅡ位点，转染ES细胞，外源基因的整合率高达78%[16]。利用同源重组技术定位操作基因组，同源重组序列不可过小，否则会使操作的精确性降低。Thomas等设计了一种载体，使突变序列位于同源重组靶基因位点两侧数千个碱基之外。利用这种替换DNA序列载体，对小鼠ES细胞Hprt位点进行精细遗传操作，制备HPRT突变性细胞株，若同源重组序列DNA长度小于从1kd，重组的准确性降低。Hasty等研究表明，以插入载体和置换载体为工具，利用同源重组使压细胞特定位点发生突变，定点突变的效率与载体同源基因序列的长度有关，当同源序列在1.3～6.7kb之间逐渐增加时，定点突变的效率也随之增加。若同源重组碱基序列大于临界长度(6～8kb)，定位突变的效率就会下降。

9 研究细胞分化的机制利用ES细胞体外培养技术，可不受干扰地对单一的影响胚胎细胞分化的因子进行系统研究。ES细胞在细胞分化研究中的主要作用是：

9.1 研究饲养层抑制ES细胞分化的生理机制 深入研究ES细胞分化抑制的机制，对于阐明细胞分化调节的生理机制，寻求细胞分化调节的途径，具有非常重要的作用。如果人们能利用ES细胞弄清细胞分化的机制，就能从基因转录、翻译等水平对细胞进行操作，定向改变细胞分化的方向。

9.2 研究ES细胞的定向分化 培养的ES细胞在去除分化抑制因素或添加诱导分化因子后就会发生定向分化，形成某种类型组织细胞。Thomas研究发现，体外培养的ES细胞能自行向内脏卵黄囊、血岛及心肌细胞定向分化。Smith等实验证明胚细胞在不含分化抑制物的培养基中能分化形成中胚层;当ES细胞在禽DIA和维生素A酸的培养基中，则分化形成体壁内胚层。

胚胎干细胞培养是如何培养的？它的具体操作过程？饲养层细胞是成纤维细胞，那它的详细作用是什麽？

【推荐】胚胎干细胞培养标准化操作规程胚胎干细胞培养标准化操作规程 6/28/01

目录

一、细胞

二、一般培养-保持胚胎干细胞处于未分化状态

培养基

细胞复苏

冻存细胞

明胶包被

细胞传代

三、体外分化

培养基

包被有多聚鸟氨酸/纤维结合蛋白的培养板（使用或不使用盖玻片）

体外分化方法

四、移植细胞的准备

细胞

多能性胚胎干细胞产生于小鼠胚泡

1．表达绿色荧光蛋白（EGFP）的B5-ES细胞。由Dr. Nagy的实验室制备。

2．D3-ATCC; CRL-1934. 我们得到时大约传了17代。

3．J1-由Dr. Jaenish的实验室友情提供。我们得到时大约传了7－9代。

4．J1rtTA-rtTA表达J1细胞，由Dr. Jaenish的实验室友情提供。

5．表达黄色荧光蛋白的YC5-ES细胞，由Dr. Nagy的实验室提供。

一般培养--维持ES细胞处于未分化状态

ES细胞培养用含有ESGRO（白血病抑制因子）的高糖培养基来阻止细胞的分化。为细胞提供包被有0.1％明胶的平板作为粘附细胞的基质。建议每2－3天从达到80％－90％融合的平板按1：8的比率传代细胞一次，细胞传代以后，在将细胞接种在0.1％明胶包被的培养皿之前，通过预先将细胞接种在没有经过包被的组织培养板2个小时，使分化细胞粘附，从而将分化和未分化细胞分开。将细胞全程置于37℃，5％CO2，100％湿度条件下培养。

培养基

ES:

配制一20×不含DMEM，HS，ESGRO的溶液（该溶液也能用于EB培养基--见下文）。分装在50ml FALCON管中，（稀释为2×，每管42ml），贮存在-20℃。通过将21ml该溶液，HS和ESGRO加入450mlDMEM中制备培养基，0.2μm滤膜过滤。贮存于4℃。 注：一瓶DMEM是500ml。

贮存液

DMEM(高糖)

马血清（HS）

L-谷氨酰胺（200mM）

MEM NEAA（10mM）

HEPES（1M）

β-巯基乙醇（55Mm）

PEST

ESGRO

复苏细胞

细胞被冻存在10％二甲基亚砜（DMSO）中防止结晶的形成，结晶的形成会损害细胞。然而，二甲基亚砜对细胞有毒性，快速的进行细胞复苏是很重要的。

步骤：

1．从液氮中取出一管细胞；

2．将冻存管置于37℃水浴中2分钟（或放到管内溶液恰好完全溶解）；

3．将细胞转移到一15ml Falcon管中；

4．加入5ml ES培养基（用培养基冲洗冻存管）；

5．离心3分钟；

6．弃上清，用2ml ES培养基重悬细胞，至少吹打10次；

7．接种在明胶包被（见下文）的6孔或6cm组织培养皿；

8．孵育。

冻存细胞

冻存液

90％HS和10％二甲基亚砜

步骤：

1．1×PBS洗细胞并留少许PBS在培养皿内；

2．用细胞刮刀收集细胞；

3．将细胞转入15ml Falcon管内并离心3分钟；

4．弃去上清并将细胞重悬于冷的冻存液中（10cm的培养皿用2ml，15cm的培养皿用6－7ml。）

5．分装于冻存管内，每管1ml；

6．置－80℃过夜，第二天移入液氮。

明胶包被

准备500ml 0.1％明胶溶液

1．将0.5g明胶溶解在500ml无钙镁的PBS中（50－65℃水浴15～30分钟）。

2．最好在溶液没有冷却的情况下通过0.2μm滤膜过滤，贮存在4℃。

包被培养板或培养皿

1．加入足量的明胶溶液覆盖培养平面（15cm培养皿加2ml，10cm培养皿加0.5～1ml，溶液的量并不重要，只要能完全覆盖培养表面就行了。）；

2．置室温30分钟；

3．去除明胶溶液，将培养板贮存在包装袋中室温放置，最好将板子平方，以免明胶污染盖子和流出培养板。

细胞传代

建议每2－3天传代细胞一次，过度生长的细胞会降低细胞的自然分化率，我们建立了一种纯化方法来去除分化细胞，在将细胞接种在明胶包被的培养板上之前，通过将分化细胞黏附在没有包被的组织培养板上去除分化细胞。纯化步骤包含在下面的方法中。

1．去除培养液；

2．1×无钙镁PBS洗涤；

3．加入1×胰酶EDTA(10×胰酶EDTA用PBS稀释。)37℃孵育5分钟。

4．加入ES培养基使胰酶失活；

5．将细胞转入15ml离心管中离心3min；

6．去除上清，将细胞重悬于2mlES培养基，至少吹打10－20次。

如果加入培养基的量较少会比较容易将细胞团弄散分开。ES细胞有聚集成团的倾向，传代过程中仔细将细胞弄散分开很重要。这样可能会减少细胞的自然分化。

7．将细胞接种在没有包被的组织培养皿中（使用和一开始同样规格的培养皿）放入温箱2小时（分化细胞在该时间内将黏附，而ES细胞仍将保持悬浮）；

8．将含有细胞的培养基转入明胶包被（见下文）的组织培养皿。吹打以确保细胞被分散开（前面已经提到--ES细胞有聚集成团的倾向）

9．建议按1：4－1：10的比率传代(ATCC)

保持细胞的传代比率很重要，以我们的经验，1：8的比率是好的，可以使细胞的自然分化降到最低。当你使用不同规格的培养板进行细胞传代可以使用表1来计算传代比率。

体外分化

多能胚胎干细胞在体内外可以分化为各种类型的细胞。我们的体外分化方法有利于神经前体细胞通过在最少量的培养基内选择（第3步），在有bFGF存在的情况下扩增（第4步）并最终分化在第5步。细胞全程培养在37℃，5％CO2，100％湿度条件下。

时间线（总时间为27～34天）

第2步；4＋1天 第3步；4－10天 第4步；4天 第5步；10－15天

培养基

EB

配制一20×不含DMEM，FBS，ESGRO的溶液（该溶液也能用于ES培养基--见前述）。分装在50ml FALCON管中，（稀释为2×，每管42ml），贮存在-20℃。将21ml该溶液和50ml FBS加入450mlDMEM中制备培养基，0.2μm滤膜过滤。贮存于4℃。 注：一瓶DMEM是500ml。

贮存液

DMEM(高糖)

胎牛血清

L-谷氨酰胺（200mM）

MEM NEAA（10mM）

HEPES（1M）

β-巯基乙醇（55Mm）

PEST（P104U/mlS104μg/ml

ITSFn and N3：

配制一20×不含DMEM/F12的溶液。分装在15ml FALCON管中，（稀释为1×，ITSFn 7.05ml，N3 12.55ml），0.2μm滤膜过滤，贮存在-20℃。将该溶液加入DMEM/F12中制备培养基，贮存于4℃。

贮存液

DMEM(高糖)

转铁蛋白50mg/ml

胰岛素5mg/ml

亚硒酸钠300μM

黄体酮（20μM）

腐胺（100μM）

PEST（P104U/ml S104μg/ml）

层粘连蛋白100μg/ml

纤维连接蛋白250μg/ml

碱性rhFGF, 10μg/ml

*在第4步将bFGF加入N3培养基使终浓度为10ng/ml。

ITSFn and N3培养基贮存液的准备

使用无菌的溶剂和稀释液，在分装之前要对溶液进行过滤，如果因为某些原因溶液在分装之前没有进行过滤，需要在管子上标明以便别人在使用时知道该溶液不能直接用于细胞培养。

贮存液 溶剂，贮存液，稀释剂和储存

转铁蛋白50mg/ml

胰岛素5mg/ml

亚硒酸钠300μM

黄体酮（20μM）

腐胺（100μM）

PEST（P104U/ml S104μg/ml）

层粘连蛋白（100μg/ml）

纤维连接蛋白（250μg/ml ）

碱性rhFGF, （10μg/ml）

包被有多聚鸟氨酸/纤维结合蛋白的培养板（使用或不使用盖玻片）

包被液的准备

多聚-L-鸟氨酸，15μg/ml

把75ml多聚-L-鸟氨酸和425ml 1×PBS混合。贮存在4℃。

纤维结合蛋白，1μg/ml

把0.5ml纤维结合蛋白和500ml 1×PBS混合。

包被过程：

1．加入多聚-L-鸟氨酸，至少2－3小时（过夜也行）

2．吸出多聚-L-鸟氨酸

3．加入纤维结合蛋白，大约1－2小时

4．吸出纤维结合蛋白，放置30分钟晾干

5．贮存在4℃

24孔板用200μl，6孔板用500μl。震荡培养板确保溶液能够覆盖盖玻片或培养孔。有时需要剧烈震荡培养板。

体外分化方法

第1步：ES培养基

在LIF（ESGRO）存在的条件下维持细胞培养

第2步：EB培养基

使用细菌培养皿去除LIF后胚状体的形成需要4天。

1．分散纯化细胞（参见上面的细胞传代部分）

2．纯化2小时后将细胞转入含有ES培养基的50ml Falcon管中，计数细胞取适量体积放入15ml管中离心3分钟。

3．用2mlEB培养基重悬细胞，吹打至少10次制成单细胞悬液

4．一个15cm的细菌培养皿接种4～5×106个细胞（1个完全融合的组织培养皿通常足以接种4个同样规格的细菌培养皿）。

5．2天后更换培养基

将胚状体转入锥形管中放置3～5分钟使细胞沉降。弃去上清，将细胞重悬于新鲜培养基并接种在新的细菌培养皿中。

6．用EB培养基培养的第4天将细胞转入没有包被的组织培养皿中（这即是细胞的移植步骤）。1个组织培养皿之中放置1个细菌培养皿，在进行第3步之前一天将胚状体黏附在同样规格的培养板上。

形成胚状体需要4天时间。在EB培养基中再培养1天使胚状体粘附在组织培养皿的表面。这一天被认为是第2步和第3步的分界。

第3步--ITSFn培养基

在最少量培养基中选择神经前体细胞

1．在胚状体接种在组织培养皿一天后将培养基换成ITSFn培养基

2．并非所有胚状体在这一时期都已经发生粘附，因此在移除培养基时要小心谨慎以使大部分胚状体留在培养皿内。

3．保持细胞在ITSFn中培养大约10天，根据需要更换培养基--大约每隔一天。

观察细胞形态，神经样细胞大约出现在第4到第7天。当神经样细胞能够被鉴别时，转入到第4步。步骤的转换应该在神经前体细胞出现第一个清晰的标志几天以后，通常是在第3步的第6到第10天。

第4步－N3培养基＋bFGF

通过将神经前体细胞培养在含有10ng/ml bFGF的培养基中进行扩增。

1.PBS洗涤，加入2ml 1×胰酶（1个15cm的培养皿所需胰酶的量根据前文表中的体积）（10×胰酶EDTA用PBS稀释）

2．37℃孵育5分钟

3．用4mlEB培养基终止胰酶活性，将细胞转入锥形管中放置3～5分钟移出细胞团，将上清移入一新的离心管离心。

4．将细胞重悬于含有bFGF的N3培养基。

5．将细胞接种在包被多聚-L-鸟氨酸/纤维连接蛋白的盖玻片上（最好将盖玻片放于24孔培养板或6孔培养板，6孔培养板中每孔放置5个盖玻片如果是塑料的放置4个，以使最大可能的获得样品数量）。24孔板接种3.5×105/孔或6孔板1.7×106/孔。

6．2天后更换培养基

第5步－N3培养基

通过撤除bFGF使神经前体细胞分化

1．细胞被接种在盖玻片上4天后将培养基换成不含bFGF的N3培养基

2．根据需要换液（大约每隔一天）

3．分化10～15天后固定细胞

移除培养基

PBS洗涤

加入4%福尔马林

室温放置30分钟

PBS洗涤2次

储存于PBS。长期储存使用含0.01％叠氮化纳的PBS

移植细胞的准备

细胞在胚状体形成4天以后被移植（相应于体外分化过程中的第2步末细胞被转种到组织培养板）。正如在前文体外分化中所描述的在移植之前4天开始形成胚状体。通常再需要一天时间以便将胚状体移植入一10cm的培养皿。

移植

1．将胚状体转移至一15ml 圆锥形管中放置3～5分钟使胚状体沉降下来。

细胞被离心3分钟会更好。放置使之沉降将会去除更多的单个细胞（包括死细胞）而这些细胞可以被离心下来。

2．去除上清将胚状体重悬于无钙镁离子的1×PBS中

3．离心3分钟

4．去除上清加入1×胰酶（10cm的培养皿加1ml）

5．37℃水浴5分钟

6．加入5mlEB培养基小心吹打约10次

小心处理细胞很重要，进行细胞传代分散细胞时不可剧烈吹打。

7．离心2分钟

8．吸出上清将细胞重悬于500μl EB培养基

9．用光滑的巴斯德吸管小心吹打5次

10．离心2次

11．吸出上清将细胞重悬于100μl EB培养基

烟酸己可碱标记ES细胞进行移植

1．准备一10μg/ml的烟酸已可碱染液（双苯酰亚胺，在冷冻室118）

2．加入1mg（你能称到的最小量）到5ml EB培养基（制成200μg/ml）

3．将溶液稀释成10μg/ml （100μl 200μg/ml 溶液和1.9ml EB培养基）

4．如前所述将细胞重悬于2ml烟酸已可碱染液而不是EB培养基中制备ES细胞悬液，

5．将悬液置于室温（或冰上）30分钟

6．离心2分钟

7．吸出上清将细胞重悬于2ml EB培养基

8．重复一次

9．离心2分钟

10．吸出上清将细胞重悬于100μl EB培养基并置于冰上。 这是我最近翻译的一篇有关胚胎干细胞的文章，译的不好，但是意思应该还算准确。不好意思，有两个表格没有发上，哪位老师告诉我该如何编辑表格。谢谢了！ 谢谢，顶！ 我也顶 很好的帖子哦!我查了好久终于找到了.万分感谢! 谢谢，现在还没用到，就当先了解一下好了。再次谢谢！ 谢谢非常感谢 有原文吗？

如果有可以发到我邮箱（j3104@163.com）吗？谢谢！！ 好贴！

能将英文原文贴上吗？或者发到我的信箱：adjfchen@hotmail.com

谢谢！ 不错不错，我这里发一些关于干细胞的相关知识

干细胞的概念

干细胞是一类具有自我更新和分化潜能的细胞。它包括胚胎干细胞和成体干细胞。干细胞的发育受多种内在机制和微环境因素的影响。目前人类胚胎干细胞已可成功地在体外培养。最新研究发现，成体干细胞可以横向分化为其他类型的细胞和组织，为干细胞的广泛应用提供了基础。

在胚胎的发生发育中，单个受精卵可以分裂发育为多细胞的组织或器官。在成年动物中，正常的生理代谢或病理损伤也会引起组织或器官的修复再生。胚胎的分化形成和成年组织的再生是干细胞进一步分化的结果。胚胎干细胞是全能的，具有分化为几乎全部组织和器官的能力。而成年组织或器官内的干细胞一般认为具有组织特异性，只能分化成特定的细胞或组织。

然而，这个观点目前受到了挑战。

最新的研究表明，组织特异性干细胞同样具有分化成其他细胞或组织的潜能，这为干细胞的应用开创了更广泛的空间。

干细胞具有自我更新能力（Self-renewing），能够产生高度分化的功能细胞。干细胞按照生存阶段分为胚胎干细胞和成体干细胞 。

1.1 胚胎干细胞

胚胎干细胞（Embryonic Stem cell， ES细胞）

当受精卵分裂发育成囊胚时，内层细胞团（Inner Cell Mass）的细胞即为胚胎干细胞。胚胎干细胞具有全能性，可以自我更新并具有分化为体内所有组织的能力。早在1970年Martin Evans已从小鼠中分离出胚胎干细胞并在体外进行培养。而人的胚胎干细胞的体外培养直到最近才获得成功。

进一步说，胚胎干细胞（ES细胞）是一种高度未分化细胞。它具有发育的全能性，能分化出成体动物的所有组织和器官，包括生殖细胞。研究和利用ES细胞是当前生物工程领域的核心问题之一。ES细胞的研究可追溯到上世纪五十年代，由于畸胎瘤干细胞（EC细胞）的发现开始了ES细胞的生物学研究历程。

目前许多研究工作都是以小鼠ES细胞为研究对象展开的，如：德美医学小组在去年成功的向试验鼠体内移植了由ES细胞培养出的神经胶质细胞。此后，密苏里的研究人员通过鼠胚细胞移植技术，使瘫痪的猫恢复了部分肢体活动能力。随着ES细胞的研究日益深入，生命科学家对人类ES细胞的了解迈入了一个新的阶段。在98年末，两个研究小组成功的培养出人类ES细胞，保持了ES细胞分化为各种体细胞的全能性。这样就使科学家利用人类ES细胞治疗各种疾病成为可能。然而，人类ES 细胞的研究工作引起了全世界范围内的很大争议，出于社会伦理学方面的原因，有些国家甚至明令禁止进行人类ES细胞研究。无论从基础研究角度来讲还是从临床应用方面来看，人类ES细胞带给人类的益处远远大于在伦理方面可能造成的负面影响，因此要求展开人类ES细胞研究的呼声也一浪高似一浪。

1.2 成体干细胞

成年动物的许多组织和器官，比如表皮和造血系统，具有修复和再生的能力。成体干细胞在其中起着关键的作用。在特定条件下，成体干细胞或者产生新的干细胞，或者按一定的程序分化，形成新的功能细胞，从而使组织和器官保持生长和衰退的动态平衡。过去认为成体干细胞主要包括上皮干细胞和造血干细胞。最近研究表明，以往认为不能再生的神经组织仍然包含神经干细胞,说明成体干细胞普遍存在，问题是如何寻找和分离各种组织特异性干细胞。成体干细胞经常位于特定的微环境中。微环境中的间质细胞能够产生一系列生长因子或配体，与干细胞相互作用，控制干细胞的更新和分化。

1.3 造血干细

造血干细胞是体内各种血细胞的唯一来源，它主要存在于骨髓、外周血、脐带血中。今年年初，协和医大血液学研究所的庞文新又在肌肉组织中发现了具有造血潜能的干细胞。造血干细胞的移植是治疗血液系统疾病、先天性遗传疾病以及多发性和转移性恶性肿瘤疾病的最有效方法。

如何利用小鼠胚胎干细胞制作纯合转基因小鼠

利用小鼠胚胎干细胞制作纯合转基因小鼠需要胚胎的培养。

哺乳类动物基因转移方法是将改建后的目的基因（或基因组片段）用显微注射等方法注入实验动物的受精卵（或着床前的胚胎细胞），然后将此受精卵（或着床前的胚胎细胞）再植入受体动物的输卵管（或子宫）中，使其发育成携带有外源基因的转基因动物。

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